date:2024-02-23 14:14:46
熒光肌動(dòng)蛋白染色，特別是使用phalloidin，通過(guò)顯微鏡深入了解細(xì)胞結(jié)構(gòu)和過(guò)程的一種強(qiáng)大方法。這種方法可以對(duì)肌動(dòng)蛋白絲進(jìn)行特定的可視化，使熒光肌動(dòng)蛋白染色成為科學(xué)家解答許多與細(xì)胞生物學(xué)相關(guān)問(wèn)題（包括細(xì)胞骨架組織和動(dòng)力學(xué)）的不可或缺的工具。
本實(shí)驗(yàn)方案中，我們提出了一種使用µ- slide VI 0.4六通道載玻片培養(yǎng)和對(duì)粘附性人纖維肉瘤細(xì)胞系HT-1080肌動(dòng)蛋白熒光染色的簡(jiǎn)便方案。
請(qǐng)注意: 在開始肌動(dòng)蛋白熒光染色之前必須檢查幾個(gè)重要的參數(shù)，如最佳細(xì)胞密度，理想的細(xì)胞培養(yǎng)器皿及底部/涂層。此外，陽(yáng)性和陰性對(duì)照是驗(yàn)證染色的必要條件。因此，我們強(qiáng)烈建議在實(shí)驗(yàn)前進(jìn)行充分的文獻(xiàn)研究。
1. 材料
1.1. 試劑和緩沖液
細(xì)胞培養(yǎng)
• HT-1080細(xì)胞(85111505, Sigma Aldrich)
• 細(xì)胞培養(yǎng)基: DMEM (D6546, Sigma Aldrich)，含10%胎牛血清 (F1283, Sigma Aldrich)
• D-PBS (14190144, Gibco)
• Accutase (A1110501, Gibco)
熒光染色與成像
• D-PBS (14190144, Gibco)
• 福爾馬林，10%，當(dāng)即可用 (HT5011, Sigma Aldrich)
• Triton-X-100 (A16046, Thermo Fisher Scientific)
• 滲透性緩沖液 (0.1% Triton-X-100 in D-PBS)
• 牛血清白蛋白 (BSA) (A1470-10G, Sigma Aldrich)
• 封閉緩沖液 (1% BSA in D-PBS)
• Phalloidin溶液:1µl Phalloidin- ifluor 488 Reagent (ab176753, Abcam)在1 ml封閉緩沖液中
• ibidi封片劑，含DAPI (50011, ibidi)
• ibidi浸漬油 (50101, ibidi)
1.2. 設(shè)備
• µ-Slide VI0.4 ibiTreat (80606, ibidi)
• µ-Slide支架 (80003, ibidi)
• 標(biāo)準(zhǔn)細(xì)胞培養(yǎng)設(shè)備(移液槍，超凈工作臺(tái)，細(xì)胞培養(yǎng)箱，培養(yǎng)瓶，細(xì)胞培養(yǎng)基，血細(xì)胞計(jì)等)
• 倒置熒光顯微鏡與適配的濾光片組
2. 方法
2.1. 細(xì)胞培養(yǎng)
在使用μ -Slide VI0.4之前，請(qǐng)閱讀使用說(shuō)明書。在無(wú)菌條件下進(jìn)行所有步驟。建議在細(xì)胞接種前一天將
µ-Slide VI0.4和細(xì)胞培養(yǎng)基放入培養(yǎng)箱中，以避免處理過(guò)程中形成氣泡。在開始實(shí)驗(yàn)之前，在具有粘附細(xì)胞的標(biāo)準(zhǔn)底的細(xì)胞培養(yǎng)瓶（例如T75）中制備HT-1080細(xì)胞。理想情況下，在實(shí)驗(yàn)當(dāng)天，細(xì)胞應(yīng)該是低融合和健康的。
在整個(gè)過(guò)程中迅速工作是至關(guān)重要的，以防止細(xì)胞干涸。
如未另行說(shuō)明，所有給定的體積都是單通道的，所有培養(yǎng)步驟都是在室溫下進(jìn)行的。
• 將10ml Accutase加入T75培養(yǎng)瓶中進(jìn)行細(xì)胞分離；在培養(yǎng)箱（37°C，5%CO2）中培養(yǎng)5分鐘。
• 收集細(xì)胞懸液，離心，并將其稀釋在少量細(xì)胞培養(yǎng)基中進(jìn)行計(jì)數(shù)。
• 計(jì)數(shù)細(xì)胞，并在細(xì)胞培養(yǎng)基中調(diào)整到最終濃度為3 × 105 cells/ml。
• 打開ibidi µ-Slide VI0.4，并將其放在µ-Slide支架或合適的表面上。
• 將30µl HT-1080細(xì)胞懸液移液填充到每個(gè)通道中。快速填充有助于避免截留氣泡。
• 通過(guò)傾斜µ-Slide通道載玻片并輕敲一側(cè)邊緣，清除通道中截留的氣泡。
• 用隨附的蓋子蓋上儲(chǔ)液池。
• 將µ-Slide通道載玻片與支架放入培養(yǎng)箱(37 °C, 5 % CO2)，讓細(xì)胞附著 ( 1小時(shí))。
• 在每個(gè)儲(chǔ)液池中加入60µl無(wú)細(xì)胞細(xì)胞培養(yǎng)基。避免截留氣泡。
• 將µ-Slide通道載玻片與支架放入培養(yǎng)箱(37 °C, 5 % CO2)，并將細(xì)胞孵育過(guò)夜。
• 就延長(zhǎng)細(xì)胞培養(yǎng)，建議每?jī)商爝B續(xù)更換一次培養(yǎng)基(詳見(jiàn)如下2.2)。
2.2. 連續(xù)更換培養(yǎng)基
• 小心地從儲(chǔ)液池中抽吸培養(yǎng)基。不要從通道中吸入任何液體。
• 輕輕地將120µl無(wú)細(xì)胞培養(yǎng)基導(dǎo)入一個(gè)儲(chǔ)液池中，使通道得以補(bǔ)充。
• 從對(duì)面的儲(chǔ)液池中抽吸舊的培養(yǎng)基。使用細(xì)胞培養(yǎng)抽吸裝置時(shí)要小心，因?yàn)檫@可能會(huì)吸走部分附著的細(xì)胞或細(xì)胞簇。
• 每個(gè)儲(chǔ)液池使用60µl無(wú)細(xì)胞培養(yǎng)基重新填充儲(chǔ)液池。
以最小容量為通道容量的三倍連續(xù)更換培養(yǎng)基
2.3. 固定, 透化和封閉
• 快速執(zhí)行所有步驟，確保通道不會(huì)干涸。為實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備足夠的滲透緩沖液和封閉緩沖液。
• 通過(guò)連續(xù)的培養(yǎng)基交換用D-PBS代替細(xì)胞培養(yǎng)基進(jìn)行洗滌。
• 抽吸大部分D-PBS。不要全部吸出。
• 用100µl福爾馬林（10%）固定細(xì)胞20分鐘。
• 連續(xù)換液，用200µl D-PBS洗滌細(xì)胞3次。
• 抽吸大部分D-PBS。不要全部吸出。
• 在100µl滲透緩沖液中孵育細(xì)胞5分鐘。
• 用200µl D-PBS連續(xù)換液清洗細(xì)胞。
• 抽吸大部分D-PBS。不要全部吸出。
• 用100µl封閉緩沖液封閉20分鐘。
• 用200µl D-PBS清洗細(xì)胞。
2.4. 染色
• 從儲(chǔ)液器和通道中吸出所有D-PBS。使用5毫升注射器填充空通道，以盡量減少引入氣泡的風(fēng)險(xiǎn)。
• 立即將30µl的phalloidin溶液加入通道中; 在暗處培養(yǎng)20分鐘。樣品應(yīng)盡可能放在暗處保存。
• 連續(xù)交換培養(yǎng)基，用200µl D-PBS洗滌細(xì)胞2次。
2.5. 封片
• 吸取所有D-PBS，立即加入ibidi含DAPI的封片劑進(jìn)行核染色，直到通道被填滿。如果使用不同的封片劑，請(qǐng)注意它必須是非干燥的，以避免損壞µ-Slide。
• 在4°C暗處儲(chǔ)存，直到成像。
• 染色后的µ-Slide可保存4周。理想情況下，應(yīng)立即進(jìn)行成像，因?yàn)檩^長(zhǎng)的存儲(chǔ)時(shí)間會(huì)降低圖像質(zhì)量。
2.6. 成像
• 在熒光顯微鏡下用適當(dāng)?shù)臑V光片組觀察細(xì)胞，必要時(shí)用ibidi浸漬油。
• 可選，疊加圖像以創(chuàng)建合并圖像。
3. 結(jié)果
HT1080細(xì)胞在µ-Slide VI 0.4通道載玻片中的寬場(chǎng)熒光顯微成像。使用phalloidin(綠色)觀察F-actin細(xì)胞骨架。細(xì)胞核用DAPI（藍(lán)色）染色。使用Plan Neofluar 40x/0.75物鏡在蔡司Axiovert 135顯微鏡上進(jìn)行成像。
您的熒光染色結(jié)果如果沒(méi)有您預(yù)期的那樣？請(qǐng)參閱 immunofluorescence troubleshooting guide
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